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标本之製作
(一)  玻片及盖玻片 (Slide and Coverslips)
　　玻片及盖玻片品质必须很好而没有萤光，玻片厚度 ≦1.0mm 者便可用，玻片之清洗，必须以中性清洁剂洗淨，再浸于含有 3％HCl 之乙醇 12～24 小时，然后再储存于纯酒精。要用时，以清洁纱布擦淨或火焰烘乾。用完后可浸于水中，移去封埋物，再经清洁剂及重酪酸－硫酸溷合物＊处理。
　　　＊重酪酸一硫酸溷合物之配法：
　　　　粗製重酪酸钾　　　　　300 gm
　　　　 20％ 硫酸水溶液 　　　3000 ml
　　使用珐琅质或陶质容器，先放入 20％ 硫酸水溶液，然后缓缓加入粗製重酪酸钾，以玻璃棒搅拌，此时会发热，俟冷却后使用。
　　目前已有处理好的玻片出售，使用上甚为方便。
(二)  组织切片 (Tissue Sections)
　　组织切片愈薄愈好 (4μ)，如果切片太厚，则可能自体及非特异萤光增加，目前都用冷冻切片机 (Cryostat) 来切，冷冻切片机包括冰冻柜 (Refrigerated Cabinet)，温度在 0℃～-30℃ 之间，切片机 (Microtome) 放在裡面，将组织在 -20℃ 冰冻 10 分钟，就可以切，切下之薄片，以玻片捺下后在室温急速乾燥。製备好之切片必须儘可能马上固定及染色。如果切片必须储放短时间 ( 约 1 週 )，则固定后密封储放于 -70℃，要染色时，切片必需回温到室温方启开。
(三)  细胞培养法 (Cell Culture Preparation)
　　细胞培养法一般用盖玻片在组织培养盘 ( 例如 24 孔 )或培养在玻璃片 (Chamber Slide) 上，再和普通接种病毒一样，接种可疑病材乳剂，培养数天，取出，乾燥、固定、水洗，再用标示抗体染色以检查特异萤光。
(四)  涂抹法或捺压法 (Smear and Impression Preparation)
　　所用玻片需很薄，一般用盖玻片代用，将所要检查之病材，如血液、组织液或其他病材，在玻片上涂抹或捺压，涂抹或捺压片在室温用吹风机或电风扇 ( 以冷风吹乾 )，以甲醇或丙酮固定，放于密封标本箱于 -20℃ 备染或马上染色。
(五)  固定 (Fixation)
　　除了使组织固定于玻片外，另一方面亦可助抗原－抗体複合物之形成，例如把脂质溶解，使抗体抗原较易反应。一般用 100％ Methanol 在室温作用 2 分钟，或丙酮于 -20℃ 下 10 分钟来固定微生物抗原及病毒。

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